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國立虎尾科技大學 生物科技系碩士班 張耀南所指導 林鑫成的 漢氏醋桿菌(Komagataeibacter hansenii)發酵檸檬皮液之抗氧化活性探討 （2021），提出citrus bioflavonoids關鍵因素是什麼，來自於四季檸檬皮、漢氏醋桿菌、發酵時間、抗氧化活性。
而第二篇論文國立高雄科技大學 水產食品科學系 謝淑玲所指導 廖晉霆的 檸檬皮精油對不易形成體脂肪及調節血脂之影響 （2021），提出因為有 檸檬精油、檸檬烯、抗肥胖、調節血脂、脂質代謝、腸道菌相的重點而找出了 citrus bioflavonoids的解答。
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漢氏醋桿菌(Komagataeibacter hansenii)發酵檸檬皮液之抗氧化活性探討
為了解決citrus bioflavonoids 的問題，作者林鑫成 這樣論述：
漢氏醋桿菌(Komagataeibacter hansenii)是來自台灣當地康普茶菇菌所篩選出一種醋酸桿菌，而四季檸檬(Citruslimon (L.) osbeck)果皮是從虎尾當地市場取得。本研究以10%(w/v)四季檸檬果皮添加於10%(w/v)蔗糖水作為發酵K. hansenii所需四季檸檬皮培養基(定義為Citrus lemon sucrose, Cls)，並探討發酵時間(0~27天)對有無添加K. hansenii之Cls基質 (分別定義為ClswKh和ClswoKh)發酵上清液的 pH 值、糖度(°Brix)與抗氧化活性之影響。經過27天的K. hansenii發酵後，Cls
wKh上清液的pH值從開始pH3.9 緩慢下降至第27天之pH2.8，而ClswoKh上清液的pH值在儲存期間沒有變化且維持在pH4.3。在糖度方面，ClswKh與ClswoKh並未隨發酵與儲存時間而有所變化，推測K. hansenii可能利用四季檸檬果皮基質替代碳源。ClswKh上清液之抗氧化活性定義為DPPH(1,1-diphenyl 2-picrylhydrazyl)自由基清除能力(scavenging activity)(DPPH% defined as scavenging percent %)、總酚類化合物含量(total phenolic content; TPC defined
as defined as galic acid equivalent, GAE)與還原能力(reducing power; RP defined as vitamin C equivalent, Vit.CE)，一般而言，ClswKh上清液之抗氧化活性皆高於ClswoKh上清液之抗氧化活性，這歸因於前培養在甘露醇基質之起始菌(starter) K. hansenii所致。ClswKh上清液之DPPH%在前9天發酵有略微上升，而後似乎持平，未有顯著變化，但其僅略高於ClswoKh上清液之DPPH%。再者，ClswKh上清液之TPC隨發酵時間增加而上升，在第15天發酵時間達到最高值0.074
mg GAE/mL，但到第18天後才逐漸下降。另外，ClswKh上清液之RP隨發酵時間增加而上升，在第12天發酵時間達到最高值0.046 Vit.CE/mL，而後逐漸下降。接著分別對ClswKh與ClswoKh上清液的DPPH%、TPC與RP值進行相互迴歸關係的探討，其中兩者的TPC-RP可得到線性關係，ClswKh線性迴歸斜率與截距值(分別接近於1.5806與0.0049 mg Vit.C/mL)略高於ClswoKh者(分別接近於1.5666與0.0030mg Vit.C/mL)，另外，對ClswKh的DPPH%-TPC迴歸關係值DPPHVmax%與1/2DPPHVmax%濃度分別接近於96
.98%與0.0244 mg GAE/mL，而DPPH%-RP之DPPHVmax%與1/2DPPHVmax%濃度值分別接近於98.33%與0.0194 mg Vit.C/mL，ClswKh的迴歸關係值皆優於ClswoKh者(分別相對接近於96.53%與0.0266 mg GAE/mL和97.25%與0.0192 mg Vit.C/mL，這些迴歸關係結果顯示應該歸因於K. hansenii起始菌前培養狀態所致，而且顯示要達到相同DPPH自由基清除能力時，TPC濃度必須約1.4倍於RP濃度，因此還原力能力貢獻較多。本研究結果顯示，K. hansenii起始培養於甘露醇基質可改進提高發酵檸檬上清液的
抗氧化活性能力，且貢獻於具有抗氧化活性的健康型康普檸檬之研究發展。
檸檬皮精油對不易形成體脂肪及調節血脂之影響
為了解決citrus bioflavonoids 的問題，作者廖晉霆 這樣論述：
摘要 IAbstract II誌謝 III目錄 IV表目錄 X圖目錄 XI縮寫對照表 XIV壹、 前言 1貳、 文獻整理 3一、檸檬的介紹及產量 3二、檸檬副產物之介紹 3(一) 檸檬副產物之種類及產量 3(二) 檸檬副產物之生理功能 51. 抗氧化作用 52. 抗菌作用 73. 調節發炎作用 84. 調節脂質代謝 85. 調節血脂 96. 抗癌作用 10三、肥胖介紹與盛行率 11(一) 肥胖的定義與成因 11(二) 世界肥胖問題 12(三) 台灣肥胖問題 12四、檸檬副產物與肥胖之相關研究 13(一) 檸檬副產物
與脂肪細胞分化及脂質代謝之研究 13(二) 檸檬副產物與調節血脂之研究 15五、肥胖與腸道菌之相關性 17(一) 人體中常見之腸道菌 18(二) 肥胖與腸道菌之相關研究 18(三) 檸檬副產物與腸道菌之相關研究 19參、 研究目的 20肆、 材料與方法 21一、實驗儀器 21二、實驗藥品 21三、實驗設計 22(一) 檸檬皮精油 (Lemon peel oil, LPO) 的製備 22(二) LPO對大鼠不易形成體脂肪及調節血脂之實驗架構 23四、實驗方法 24(一) LPO中的檸檬烯 (Limonene) 含量分析 24(二) 實驗動物品系及飼養環境 25
(三) 高熱量飲食製備 25(四) 飼養模式 26(五) 動物犧牲及樣品處理 27(六) 動物生長特徵之分析 281. 飼料攝取量 (Food intake) 282. 體重變化率 (Weight gain) 283. 飼料轉換率 (Feed conversion rate, FCR) 284. 李氏指數 (Lee’s index) 28(七) 臟器相對重量之分析 281. 肝臟、腎臟、副睪、腸系膜及腎周脂肪組織相對重量計算 282. 總體脂肪含量相對重量計算 29(八) 血清生化指標之分析 291. 血清中三酸甘油酯含量測定 292. 血清中總膽固醇含量測定 30
3. 血清中葡萄糖含量測定 30(九) 肝臟脂質含量之分析 301. 肝臟中脂質樣品製備 302. 三酸甘油酯含量測定 313. 總膽固醇含量測定 31(十) 組織形態之分析 31(十一) 三酸甘油酯及膽固醇代謝基因表現之分析 311.總核糖核酸萃取 312. 總核糖核酸定量 323. 總核醣核酸反轉錄成互補去氧核醣核酸 324. 即時聚合酶連鎖反應 32(十二) 大鼠腸道菌相之分析 361. 物種多樣性 (Species diversity) 37(1) α-多樣性 (Alpha-diversity) 37(2) β-多樣性 (Beta-diversity) 3
72. 相對豐富度 (Relative abundance) 37(十三) 統計分析 37伍、結果 39(一) LPO中的檸檬烯含量分析 39(二) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠生長特徵之影響 40(三) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠血清生化指標之影響 42(四) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠臟器外觀及組織變化之影響 44(五) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟脂質含量之影響 52(六) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠副睪脂肪三酸甘油酯代謝相關基因之影響 541. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠副睪脂肪細胞分化路徑調控之影響 542. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠
副睪脂肪三酸甘油酯合成路徑調控之影響 563. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠副睪脂肪三酸甘油酯分解路徑調控之影響 58(七) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟三酸甘油酯及膽固醇代謝相關基因之影響 601. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟三酸甘油酯合成路徑調控之影響 602. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟三酸甘油酯分解路徑調控之影響 623. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟膽固醇合成路徑調控之影響 644. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟膽固醇代謝路徑調控之影響 66(八) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠腸道菌相之影響 681. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大
鼠腸道菌相α-多樣性之影響 682. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠腸道菌相β-多樣性之影響 693. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠腸道菌門組成之影響 704. LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠腸道菌科組成之影響 72陸、討論 75(一) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠生長特徵之影響 75(二) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠血清生化指標之影響 75(三) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠肝臟脂質之影響 76(四) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠三酸甘油酯及膽固醇代謝之影響 76(五) LPO對高熱量飲食誘導肥胖大鼠腸道菌相之影響 77(六) 探討LPO具有不易形成體脂肪及調
節血脂之活性成分 78柒、結論 79捌、參考文獻 80